Viabilidad y germinación de semillas de Catasetum fimbriatum (Orchidaceae) según su posición dentro del fruto
DOI:
https://doi.org/10.14198/cdbio.32339Palabras clave:
cultivo in vitro, micropropagación, orquídeas amenazadas, catasetum, semillas, in vitro cultureResumen
Catasetum fimbriatum es una orquídea epífita nativa del Bosque Atlántico, que está en peligro de extinción y puede conservarse a través de cultivo in vitro. Para utilizar dicha herramienta biotecnológica, es necesario realizar distintos estudios que permitan conocer mejor la fisiología de las semillas. El objetivo de este trabajo fue evaluar el porcentaje de viabilidad y tasa de germinación de las semillas de C. fimbriatum, según la posición que estas ocupan en el fruto, así como el porcentaje de supervivencia de las plántulas in vitro durante la aclimatación. Se cosecharon frutos maduros y cerrados, de los cuales se tomaron muestras de semillas de su porción apical, media y basal. Las semillas fueron sometidas a una prueba topográfica de tetrazolio para analizar su viabilidad y evaluar su germinación in vitro, por lo que se cultivaron en un medio basal Murashige y Skoog a la mitad de su concentración. Una vez que las plantas tuvieran un tamaño de 2 a 3 cm fueron sometidas a un proceso de aclimatación de dos fases, la primera en bandejas plásticas con perlita y la segunda en macetas con corteza de pino. La viabilidad y germinación de las semillas de C. fimbriatum disminuye del ápice hacia la base del fruto. El mayor porcentaje de supervivencia se dio en plántulas provenientes de semillas de la porción apical y basal del fruto. En C. fimbriatum la viabilidad y germinación de las semillas, así como la supervivencia de las plántulas en la etapa de aclimatación se vio afectada por la ubicación de las semillas en el fruto.
Financiación
Estudio realizado en el marco del proyecto “Estudios de polinización y germinación de semillas de orquídeas nativas de la Selva Misionera en peligro de extinción” (16/F1177-TI), financiado por la Facultad de Ciencias Forestales de la Universidad Nacional de Misiones de Argentina.Citas
Amadeu, R. A. (2019). Less light, more growth? Effects of the absence of light on roots of in vitro of Catasetum fimbriatum (Orchidaceae). International Journal of High School Research, 1(2), 14-16. https://doi.org/10.36838/v1i2.3
Arditti, J. & Ghani, A.K.A. (2000). Tansley Review No. 110. Numerical and physical properties of orchid seeds and their biological implications. New Phytologist, 145(3): 367-421. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2000.00587.x
Barthlott W, Große-Veldmann B, & Korotkova N. (2014). Orchid seed diversity. A scanning electron microscopy survey. Turland N. J y Rodewald M, editores. Berlin: Botanic Garden and Botanical Museum Berlin-Englera.
Bonilla-Morales, M.M., Aguirre Morales, A.C. & López Toscano, H. (2016). Diversidad y conservación de Catasetum (Orchidaceae: Catasetinae) en el Departamento de Santander, Colombia. Ciencia en Desarrollo 7(2): 143-154. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_ arttext&pid=S0121-74882016000200005. https://doi.org/10.19053/01217488.v7.n2.2016.3925
Brandt, K., Machado, I. C., Navarro, D. M. D. A. F., Dötterl, S., Ayasse, M., & Milet-Pinheiro, P. (2020). Sexual dimorphism in floral scents of the neotropical orchid Catasetum arietinum and its possible ecological and evolutionary significance. AoB Plants, 12(4), plaa030. https://doi.org/10.1093/aobpla/plaa030
Carranza-Álvarez, C., Trinidad-García, K.L., Reyes-Hernández, H., Castillo-Pérez, L.J. & Fortanelli- Martínez, J. (2021). Efecto de extractos orgánicos naturales sobre la micropropagación in vitro de Vanilla planifolia Jacks. ex Andrews (Orchidaceae). Biotecnia 23(1): 5-12. https://doi.org/10.18633/biotecnia.v23i1.805
Chiapero, A.L., Melgar, S., Ferreras, A.E. & Ashworth, L. (2025). Pre-dispersal seed predation decreases plant progeny performance: the role of seed position within the fruit. Annals of Botany 136(4): 783-794. https://doi.org/10.1093/aob/mcaf106
del Cristo-Banda-Sánchez, L., Pinzón-Ariza Y.H. & Vanegas-Martínez. L.E. (2017). Características físicas y germinativas de semillas de la orquídea Prosthechea sp. de la zona andina, Fusagasugá, Colombia. Biota Colombiana 18(1): 80-87.
https://doi.org/10.21068/c2017.v18n01a6
De Melo-Ferreira, W., de Oliveira, S.P., Mamoru-Suzuki, R., Ferreira-Silva, K.L. & Soares Júnior, J.W.P. (2018). Germination, growth and morpho-anatomical development of Catasetum macrocarpum (Orchidaceae) in vitro. Rodriguésia 69(4): 2137-2151. https://doi.org/10.1590/2175-7860201869442
Duarte, E.R., Da Vega, L., Ortiz, L.M. Samudio, A. & Küppers, G. (2022). Evaluación de la germinación de semillas de orquídeas según el tiempo de inmersión en hipoclorito de sodio. Innova Biology Sciences 2(2): 24-34.
https://doi.org/10.58720/ibs.v2i2.42
Duarte, E.R., Mangeón, V., Küppers, G.F., Rocha, P. & Niella, F. (2017). Tamaño y viabilidad de semillas: implicancias en la evolución y conservación de Phaius tankervilleae (Orchidaceae). Caldasia 39(2):388-399. https://doi.org/10.15446/caldasia.v39n2.62184
Duarte, E.R., Rubenich, R., Thalmayr, P.N., Ortiz, L.M., Rocha, S.P. Niella, F.O. & Küppers, G. (2021). Efecto del tipo de polinización en la formación de frutos y capacidad germinativa de las semillas de Cyrtopodium hatschbachii Pabst. Revista Forestal Yvyrareta 29(12): 43-51.
Faast, R., Facelli, J.M. & Austin, A.D. (2011). Seed viability in declining populations of Caladenia rigida (Orchidaceae): are small populations doomed? Plant Biology 13: 86-95. https://doi.org/10.1111/j.1438-8677.2010.00367.x
Hoyos, J.S.Z., Figueroa, C.J.M., Morales, D.A.A., Benítez, Ó.J.V., Machado, F.L. & Ospina, J.T.O. (2020). Estructura poblacional y agentes polinizadores de Catasetum ochraceum en los farallones de la cordillera occidental (La Vorágine, Colombia). Revista Facultad de Ciencias Básicas 16(2): 31-40. https://doi.org/10.18359/rfcb.5098
Kauth, P.J., Dutra, D., Johnson, T.R., Stewart, S.L., Kane, M.E. & Vendrame, W. (2014). Part 38: Techniques and applications of in vitro orchid seed germination. En: Teixeira da Silva, J. A. (ed.). Floriculture, Ornamental and Plant Biotechnology, Advances and Tropical Issues. Vol. 5. Global Science Books. Londres, UK. pp. 375-391.
Koene, F.M., Amano, É. & Ribas, L.L.F. (2019). Asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Acianthera prolifera (Orchidaceae). South African Journal of Botany 121: 83-91. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2018.07.019
Lallana, V.H. & Di Persia, J.F. (2018). Caracterización morfométrica de semillas de cuatro especies de orquídeas terrestres nativas de Argentina. Ciencia, Docencia y Tecnología 29(57): 272-284. https://doi.org/10.33255/2957/423
López-Puc, G. & Herrera-Cool, G.J. (2022). Asymbiotic germination, in vitro conservation and regeneration of Catasetum integerrimum. Polibotánica 53: 135-149. https://doi.org/10.18387/polibotanica.53.9
Machnicki-Reis, M., Engels, M.E., Petini-Benelli, A. & de Camargo-Smidt, E. (2015). O gênero Catasetum Rich. Ex Kunth (Orchidaceae, Catasetinae) no Estado do Paraná, Brasil. Hoehnea 42(1):185-194. https://doi.org/10.1590/2236-8906-44/2014
Mayo-Mosqueda, A., Maceda-López, L.F., Andrade-Canto, S.B., Noguera-Savelli, E., Caamal-Velázquez, H., Cano-Sosa, J.D.S. & Alatorre-Cobos, F. (2020). Efficient protocol for in vitro propagation of Laelia rubescens Lindl. from asymbiotic seed germination. South African Journal of Botany 133: 264-272. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2020.07.030
Milet-Pinheiro, P. & Gerlach, G. (2017). Biology of the Neotropical orchid genus Catasetum: A historical review on floral scent chemistry and pollinators. Perspectives in Plant Ecology, Evolution and Systematics 27: 23-34. https://doi.org/10.1016/j.ppees.2017.05.004
Moraes, M.C., Bertão, M.R., Castilho-Custódio, C. & Machado-Neto, N.B. (2023). The influence of pre-treatment on germination of three species of Catasetum (Orchidaceae). Journal of Seed Science 45: e202345010. https://doi.org/10.1590/2317-1545v45266264
Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiology Plant 15(3): 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Myers, N., Mittermeier, R.A., Mittermeier, C.G., da Fonseca, G.A.B. & Kent, J. (2000). Biodiversity hotspotsforconservationpriorities.Nature403(6772):853-858. https://doi.org/10.1038/35002501
Ortega-Larrocea,M.P.,Martínez-Palacios,A.&Chávez-Ávila, V.M.(2007).Conservación y propagación de orquídeas. Restauración, Conservación y Manejo 483-495.
Ortúñez, E., Pérez-Guillén, A. & Gamarra, R. (2025). Characterization of fruit and seed development in the genera Anacamptis and Serapias (Orchidaceae). Plants 14(8): 1229. https://doi.org/10.3390/plants14081229
Paese, A., Paglia, A., Pinto, L.P., Foster, M.N., Fonseca M. & Sposito, R. (2010). Fine-scale sites of global conservation importance in the Atlantic Forest of Brazil. Biodiversity and Conservation 19: 3445-3458. https://doi.org/10.1007/s10531-010-9906-x
Pedraza-Santos, M. (2017). La propagación masiva de orquídeas (Orchidaceae): una alternativa de conservación de especies silvestres. Agroproductividad 10(6): 31-36.
Pérez-Martínez, B.A. & Castañeda-Garzón, S.L. (2016). Propagación in vitro de orquídeas nativas como una contribución para la conservación ex situ. Biotecnología Vegetal 16(3): 143-151.
Prenzier-Suzuki, A.B., Morais-Vidal, T.C., Cito-Alves, G.A., Bertoncelli Junior, D., Biz, G., Sorace, M. & Tadeu de Faria, R. (2018). Cryopreservation of Brazilian orchid (Catasetum atratum Lindl.) seed at risk of extinction. Australian Journal of Crop Science 12(7): 1051-1057. https://doi.org/10.21475/ajcs.18.12.07.PNE809
Ribeiro, M.C., Metzger, J.P., Martensen, A.C., Ponzoni, F.J. & Hirota, M.M. (2009). The Brazilian Atlantic Forest: How much is left, and how is the remaining forest distributed? Implications for conservation. Biological Conservation 142(6): 1141-1153. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2009.02.021
Rineksane, I.A., Nu'imah, M.N.K. & Astuti, A. (2023). Effect of different types of medium and fertilizer on acclimatization of Vanda tricolor. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science 1172: 012026. https://doi.org/10.1088/1755-1315/1172/1/012026
RStudio Team. (2020). RStudio: Integrated Development Environment for R. RStudio, Inc. Boston, USA. http://www.rstudio.com/
Salazar-Mercado, S.A., Amaya-Nieto, A.Z. & Barrientos-Rey, F. (2013). Evaluación de diferentes medios de cultivo in vitro en el desarrollo de híbridos de Phalaenopsis (Orchidaceae). Revista Colombiana Biotecnología 15(2): 97-105.
https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v15n2.41268
Salazar-Mercado, S.A., Quntero-Caleño, J.D. & Moreno-Rozo, L.Y. (2020). Improvement of the methodology of the tetrazolium test using different pretreatments in seeds of the genus Epidendrum (Orchidaceae). Journal Seed Science 42: e202042231028.
https://doi.org/10.1590/2317-1545v42231028
Salazar-Mercado, S.A. & Vega-Contreras, N.A. (2017). Asymbiotic seed germination and in vitro propagation of Cattleya trianae Linden & Reichb.f. (Orchidaceae). Acta Agronómica 66(4): 544-548. https://doi.org/10.15446/acag.v66n4.63597
Sánchez, B.M., Nova-Pinedo, M. & Espinal-Coaquira, J.A. (2022). Germinación in vitro de Zigopetalum maculatum con diferentes protocolos de desinfección y adición de agua de coco en el medio de cultivo. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales 9(2): 26-36. https://doi.org/10.53287/szsf1344ls18k
Taylor, J.S., Blackman, S.J. & Yeung, E.C. (1982). Hormonal and structural aspects of fruit development in the orchid Epidendrum. Journal of Experimental Botany 33(3): 495-505. https://doi.org/10.1093/jxb/33.3.495
Teixeira da Silva, J.A., Hossain, M.M., Sharma, M., Dobránszki, J., Cardoso J.C. & Zeng, S. (2017). Acclimatization of in vitro-derived Dendrobium. Horticultural Plant Journal 3(3): 110-124. https://doi.org/10.1016/j.hpj.2017.07.009
Thevenon, M.A., Dosio, G.A.A., Cardinali, F.J. & Aguirrezábal, L.A.N. (2000). Yield of different head positions of sunflower (Helianthus annuus L.) and its relationship with vascularization. Helia 23(33):85-96.
https://doi.org/10.1515/helia.2000.23.33.85
Torres, A.J. & Sanabria M.E. (2011). Efecto del ambiente de desarrollo sobre la anatomía foliar de Cattleya jenmanii Rolfe y C. lueddemanniana Rchb. f. (Orchidaceae). Acta Botanica Venezuelica 34(1):199-214.
Tremblay,R.L.,Ackerman,J.D.,Zimmerman,J.K.&Calvo,R.N.(2005).Variationinsexualreproduction in orchids and its evolutionary consequences: a spasmodic journey to diversification. Biological Journal of the Linnean Society 84(1): 1-54.
https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2004.00400.x
Zubek, H., Curtivo, L.B. Pessoa, E.M., Caxambu, M.G., Dettke, G.A., Temponi, L.G. & Silva, S.M. (2024). Orchidaceae in Iguaçu National Park, Paraná, Brazil. Rodriguésia 75: e01252023. https://doi.org/10.1590/2175-7860202475064
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2026 Lorena Marcela Ortiz, Marcela Agustina Báez, Guillermo Küppers, Daily García, Evelyn Raquel Duarte
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
